Para poder determinar si la muestra estaba dentro de los valores normales de los indices eritrocitarios tuvimos que realizar tres pruebas diferentes: Conteo de eritrocitos, Determinación de Hemoglobina y Hematocrito
Hb:
El estandar fue de 0.340 y la absorbancia de la muestra fue de 0.353, por lo tanto, la hemoglobina fue de 15.574 g/dl osea un 37.6%
Conteo de eritrocitos:
El resultado del conteo de eritrocitos fue de 3,950,000 eritrocitos.
Hematocrito:
El resultado del Hto fue de 43.5%
Los indices fueron:
H.C.M. : 39.48
CHCM: 35.4%
VCCM: 111.5 u cubicas
Observaciones: Los resultados del VCCM estuvieron un poco por encima de los normales, sin embargo, el resto de los examenes resulto estar dentro de los parámetros esperados. Esto nos ayuda a confirmar los niveles básicos sanguíneos en una persona y pueden ayudarnos a identificar si hay anemias en el paciente, y si las hay, de que tipo.
domingo, 13 de abril de 2014
viernes, 4 de abril de 2014
Hematocrito
El hematocrito (Hto) es uno de los métodos más exactos para determinar el volumen de eritrocitos en sangre expresado en gramos por decilitro. Existen dos formas de realizar un hematocrito, el método por tubo de Wintrobe y el método por tubo capilar.
Método de Wintrobe:
Materiales
-Tubo de Wintrobe
-Pipeta Pasteur
Procedimiento:
1.- Se obtiene una muestra de sangre en un tubo morado
2.-Con la pipeta pasteur, se llena el tubo de Wintrobe hasta la marca 10, cuidandose de que no haya ninguna burbuja
3.-Se mete a la centrifuga a 3000 rpm por media hora.
4.-Al terminar el tiempo se realiza la lectura
Resultado: 47%
Conclusión: La muestra fue de una mujer por lo tanto se encuentra dentro de los valores normales
Método de tubo capilar:
Materiales:
-Tubo capilar
Procedimiento:
1.-Se obtiene sangre por medio de una punción cutánea (también puede ser utilizada sangre venosa de un tubo morado)
2.-Se coloca el extremo coloreado del tubo capilar al borde de la sangre y se rota suavemente para que se vaya llenando.
3.-Se llena el tubo a 2 terceras partes de su capacidad.
4.-Se sella el tubo, ya sea con plastilina o quemando el extremo opuesto del capilar
5.-Se mete a la microcentrífuga a 1000 rpm por 10 minutos.
6.-Al terminar el tiempo, se coloca el tubo sobre la escuadra de medición y se realiza la lectura.
Resultado: 47%
Conclusión: La muestra fue la misma para ambos exámenes y el resultado fue el mismo al de la prueba de macrohematocrito (Método del tubo de Wintrobe) por lo que confirmamos que ambos resultados eran correctos.
Método de Wintrobe:
Materiales
-Tubo de Wintrobe
-Pipeta Pasteur
Procedimiento:
1.- Se obtiene una muestra de sangre en un tubo morado
2.-Con la pipeta pasteur, se llena el tubo de Wintrobe hasta la marca 10, cuidandose de que no haya ninguna burbuja
3.-Se mete a la centrifuga a 3000 rpm por media hora.
4.-Al terminar el tiempo se realiza la lectura
Resultado: 47%
Conclusión: La muestra fue de una mujer por lo tanto se encuentra dentro de los valores normales
Método de tubo capilar:
Materiales:
-Tubo capilar
Procedimiento:
1.-Se obtiene sangre por medio de una punción cutánea (también puede ser utilizada sangre venosa de un tubo morado)
2.-Se coloca el extremo coloreado del tubo capilar al borde de la sangre y se rota suavemente para que se vaya llenando.
3.-Se llena el tubo a 2 terceras partes de su capacidad.
4.-Se sella el tubo, ya sea con plastilina o quemando el extremo opuesto del capilar
5.-Se mete a la microcentrífuga a 1000 rpm por 10 minutos.
6.-Al terminar el tiempo, se coloca el tubo sobre la escuadra de medición y se realiza la lectura.
Resultado: 47%
Conclusión: La muestra fue la misma para ambos exámenes y el resultado fue el mismo al de la prueba de macrohematocrito (Método del tubo de Wintrobe) por lo que confirmamos que ambos resultados eran correctos.
sábado, 29 de marzo de 2014
Determinación de Hb
DETERMINACIÓN
DE LA HEMOGLOBINA
Objetivo:
Determinar cuántos
gr de hemoglobina (Ha) hay en toda la sangre circulante, para tener un diagnóstico
clínico ya que se pueden variar diversas enfermedades debido a un valor anormal
de Hemoglobina.
Fundamento:
La
hemoglobina es una proteína conjugada que sirve para el transporte de oxígeno y
dióxido de carbono. La masa total de eritrocitos de un adulto contiene unos
600gr. De hemoglobina capaces de transportar 800ml de oxígeno.
Una
molécula de hemoglobina consta de 2 pares de cadenas polipépticas (unión de
aminoácidos) (globina) y 4 grupos proteicos HEM que contienen cada uno un átomo
de hierro en estado ferroso. Cada punto HEM se localiza en una zona determinada
de una de las cadenas de polipépticos. Localizando cerca la superficie de la
molécula, el HEM se combina de forma reversible con una molécula de oxígeno y
dióxido de carbono. Este grupo HEM es el responsable del color rojo de la
hemoglobina (Hb).
La parte
proteica o globina tiene 4 cadenas polipeptídicas que se denominan con las
letras α, β, γ, δ. Existe una cadena más la ε que está presente durante los 3 primeros meses de vida se diferencian
unas de las otras en el numero o posición (de los aminoácidos de los que están
compuestas). Por lo tanto existen varios tipos de Hb. en el ser humano que se
pueden encontrar (Hb A, Hb A1, Hb F, Hb Gower)
Las
distintas Hb tienen espectros de absorción características a las que determina
en un espectrofotómetro. La identificación de diferentes formas de la Hb con la
determinación de sus espectros de absorción puede hacerse de una manera
sencilla
Material y Equipo:
· Un espectrofotómetro.
· Una pipeta de vidrio graduada de 5 ml
· Tubos de ensayo.
· Cubetas cuadradas.
· Gradilla
· Gasa
Reactivos:
· Reactivo Drabkin
Técnica:
1.-En un
tubo de 13 x 100 colocar exactamente 5 ml de reactivo de Drabkin, marcarlo como
problema (P).
2.-Obtener
5 ml de sangre venosa con anticoagulante (EDTA).
3.-Con una
pipeta automática o pipeta de Shali se toma exactamente 0,02 ml (20 µL) de
sangre total, limpiar luego la punta de la pipeta.
4.-La
sangre tomada del tubo con EDTA se vierte en el tubo que contenga reactivo de
Drabkin. Se enjuaga 3 veces y se mezcla.
5.- Mezcle
la solución de Drabkin con la sangre por inversión y con mucha precaución
6.-Dejar en
reposo de 5 a 10 minutos para que se
efectúe la reacción.
7.-Después
de ese tiempo se llenan las cubetas y se procede la lectura.
8.-Leer en
absorbancia con filtro verde a 540 nm llevando a cero el fotómetro con agua
destilada / Drabkin.
Resultado:
El
espectrofotómetro nos dio como resultado .353 y después de hacer los cálculos correspondientes
el resultado fue de 15.5. La muestra fue de una mujer por lo cual se encuentra
dentro de los valores normales.
Observaciones:
Este es uno
de los análisis más fáciles de realizar ya que la máquina hace todo por
nosotros
Conclusiones:
Existen
varios factores para determinar cuándo y con qué frecuencia se pueden realizar
los exámenes. Se puede sugerir un examen o llegar a ser necesario cuando
aparecen ciertos signos o síntomas.
domingo, 10 de noviembre de 2013
Técnica de Willis
OBJETIVO: Aprender
a realizar diferente métodos para la identificación y estudio de los parásitos
en este caso la búsqueda de huevos y quistes.
FUNDAMENTO:
Willis en 1921, describe este método basado en la propiedad que tienen las soluciones
de densidad mayor de hacer flotar objetos menos densos. Este método está
recomendado específicamente para la investigación de protozoarios y helmintos,
consiste en la preparar la materia fecal con solución saturada de cloruro de
sodio.
Es un método
de concentración por flotación simple. Consiste en preparar el
material fecal con Solución saturada de ClNa.
Utilidad:
Recomendado
especialmente para la investigación de geohelmintos.
Los Huevos de helmintos de peso específico menor que la solución saturada de NaCl tienden a subir y adherirse a una lámina colocada en contacto con la superficie del líquido.
Este método es de alta sensibilidad en el diagnóstico de huevos livianos de helmintos: A. duodenale, N. americanus, A. lumbricoides, H. nana.
Limitaciones
los huevos y quistes de peso específico menor que la solución saturada de cloruro de sodio tienden a adherirse a un cubreobjetos colocado
Los Huevos de helmintos de peso específico menor que la solución saturada de NaCl tienden a subir y adherirse a una lámina colocada en contacto con la superficie del líquido.
Este método es de alta sensibilidad en el diagnóstico de huevos livianos de helmintos: A. duodenale, N. americanus, A. lumbricoides, H. nana.
Limitaciones
los huevos y quistes de peso específico menor que la solución saturada de cloruro de sodio tienden a adherirse a un cubreobjetos colocado
MATERIAL:
· Vaso
de precipitado
· Embudo
· Tubo
de ensaye
· Portaobjetos
· Cubreobjetos
· abate
lenguas
REACTIVOS
· Sol.
Saturada de NaCl
· Sol.
De yodo lugol
PROCEDIMIENTO:
1.-
Tomar aproximadamente1gr de heces fecales con un abate lenguas.
2.-
Colocar la muestra en un vaso de precipitado y mezclar con 10ml de solución
saturada de cloruro de sodio.
3.-En
un tubo de ensaye filtre la mezclar con una gasa, llenando completamente el
tubo.
4.-Coloque
un portaobjetos sobre el tubo de manera que el líquido haga contacto con el
portaobjetos.
5.-Esperamos
de 5 a 10 minutos.
6.-Los
quistes o huevos flotaran y quedaran adheridos a la cara del portaobjetos que
está en contacto con la mezcla.
7.-Colocar
una gota de yodo lugol en el porta objetos y colocar el cubreobjetos.
8.-Examinar
la muestra al microscopio con el objetivo 40x, buscamos quistes o huevecillos
de parásitos.
9.-Reportar
los resultados
OBSERVACIONES
En
esta práctica realizamos dos muestras diferentes, en la primera no encontramos
nada interesante solo logramos ver restos de alimentos y en la segunda un campo
de quistes en especial de Entamoeba histolytica.
domingo, 6 de octubre de 2013
Práctica 4: Técnica de Ritchie
Fundamento
Se basa en la concentración de los quistes y huevos por sedimentación mediante la centrifugación, con la ayuda de formol y éter para separar y visualizar los elementos parasitarios.
Unas ventajas que tiene ése método es concentrar y no deformar las formas parasitarias, permite el transporte y almacenamiento de la materia fecal procesada antes de ser examinada, se usa cuando se necesita una técnica para la evaluación de tratamiento y determinación de frecuencia.
Se basa en la concentración de los quistes y huevos por sedimentación mediante la centrifugación, con la ayuda de formol y éter para separar y visualizar los elementos parasitarios.
Unas ventajas que tiene ése método es concentrar y no deformar las formas parasitarias, permite el transporte y almacenamiento de la materia fecal procesada antes de ser examinada, se usa cuando se necesita una técnica para la evaluación de tratamiento y determinación de frecuencia.
Material
y equipo
Centrifuga
Tubos de ensaye cónicos de 15 ml
Gasa cortada en cuadros
Embudos de polietileno
Vasos de precipitado de 5 ml
Aplicadores de madera
Pipetas Pasteur con bulbo
Portaobjetos de 26 x 76 mm
Cubreobjetos de 22 x 22 mm
Microscopio
Centrifuga
Tubos de ensaye cónicos de 15 ml
Gasa cortada en cuadros
Embudos de polietileno
Vasos de precipitado de 5 ml
Aplicadores de madera
Pipetas Pasteur con bulbo
Portaobjetos de 26 x 76 mm
Cubreobjetos de 22 x 22 mm
Microscopio
Solución salina isotónica
Solución de formaldehido al 10%
Éter
Solución de formaldehido al 10%
Éter
Método
a) Con el aplicador de madera se coloca aproximadamente 1 gr. de la materia fecal en el vaso de precipitados, se añaden 10 ml de solución salina y se homogeniza
a) Con el aplicador de madera se coloca aproximadamente 1 gr. de la materia fecal en el vaso de precipitados, se añaden 10 ml de solución salina y se homogeniza
b) Se filtra la suspensión a través de la gasa
colocada en el embudo, recogiendo el filtrado en el tubo cónico
c) Se centrifuga la suspensión durante 2 minutos a
2000 rpm
d) Se decanta el sobrante y se resuspende el
sedimento con solución salina, centrifugando, decantando y resuspendiendo 2
veces mas
e) Al último sedimento se agregan 10 ml de solución
de formaldehído al 10% se mezcla y se deja reposar durante 10 minutos
f) Se añaden después 5 ml de éter, se tapan los
tubos con tapones de caucho y se agitan enérgicamente durante 30 segundos.
g) Se centrifuga durante 2 minutos a 2000 rpm
h) Después de centrifugar se observan 4 capas:
* Éter e la superficial
*Un tapón de restos fecales
*Formaldehído
*Sedimento en el fondo del tubo, conteniendo los elementos parasitarios
* Éter e la superficial
*Un tapón de restos fecales
*Formaldehído
*Sedimento en el fondo del tubo, conteniendo los elementos parasitarios
i) Se decanta el sobrante
j) Se introduce la pipeta Pasteur hasta el
sedimento, se extrae con cuidado una gota del sedimento y se coloca en un
portaobjetos
k) Se le añade una gota de lugol y con uno de los
ángulos del cubreobjetos se homogeniza, cubriéndolo con el mismo
l) Se observa la preparación en el microscopio con
objetivos de 10X y 40X
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